Использование моющих и антимикробных электрохимически активированных растворов, синтезированных на установках СТЭЛ в судебно-медицинских и патолого-анатомических лабораториях для обработки секционных помещений и в целях экспресс-консервации.

УДК 541.13; 340.6; 648.6; 616-091

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ МОЮЩИХ И АНТИМИКРОБНЫХ ЭЛЕКТРОХИМИЧЕСКИ АКТИВИРОВАННЫХ РАСТВОРОВ, СИНТЕЗИРОВАННЫХ НА УСТАНОВКАХ СТЭЛ В СУДЕБНО-МЕДИЦИНСКИХ И ПАТОЛОГО-АНАТОМИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЯХ ДЛЯ ОБРАБОТКИ СЕКЦИОННЫХ ПОМЕЩЕНИЙ И В ЦЕЛЯХ ЭКСПРЕСС-КОНСЕРВАЦИИ.

В.В. Колкутин, А.И. Русанова

Центральная судебно-медицинская лаборатория

Министерства обороны Российской Федерации, г. Москва

Растворы, синтезированные на установках СТЭЛ, отличаются экономичность, простотой получения, доступностью, экологической и токсикологической безопасностью, безвредностью для организма человека и животных, могут быть получены в больших объемах на месте применения. Электрохимически активированные растворы типа анолита, а также католит (вспомогательный раствор) следует считать предпочтительными для использования их в целях мойки и дезинфекции секционных помещений и инструментов в лабораториях судебно-медицинского и патолого-анатомического профиля. При проведении экспресс-консервации трупов консервирующий раствор на основе анолита, препятствует развитию в биологических тканях гнилостных и автолитических процессов. Разработаны соответствующие методические рекомендации.

Электрохимическая активация, анолит, католит, судебная медицина, патологическая анатомия, дезинфекция, экспресс консервация трупов.

А. ЭХА растворы для дезинфекции секционных помещений судебно-медицинских и патолого-анатомических лабораторий

Специалисты ЦСМЛ МО РФ провели исследование эффективности электрохимически активированных растворов, синтезированных на установках СТЭЛ на основе проточных электрохимических модулей ПЭМ, для мойки и дезинфекции специальных помещений и специального оборудования, которые используются при секционной работе.

Объекты исследования: 1) предметы секционного зала ЦСМЛ МО РФ, - поверхности секционных столов (мрамор), окон (стекла), подоконников, стен (кафель), столиков для исследования органокомплексов, подголовники для трупов (дерево); 2) инструменты (нержавеющая сталь); 3) воздух в секционном помещении.

Цели исследования:

определить микрофлору объектов исследования в секционном зале при текущей обработке дезинфицирующими таблетками "Хлоросепт" (производство Wexford, Ireiand);
определить эффективность обеззараживания объектов исследования в секционном зале при обработке секционного помещения электрохимически активированными растворами, синтезированными на установках СТЭЛ.

Методы исследования: микробиологическое исследование посевов с поверхностей исследуемых объектов и из воздуха секционного помещения.

Результаты исследования.

1. В результате проведенного исследования микрофлоры секционного зала выявлено:

в смывах с поверхностей исследуемых объектов и в воздухе секционного помещения в большом количестве присутствовали грибы (плесневые и дрожжеподобные) и непатогенные формы Г⁺ и Г- кокков;
несмотря на большую видимую "загрязненность" самого помещения механической грязью (пыль, песок, земля и т.д.) наиболее обсемененными являются секционный стол и деревянный подголовник ( до 1× 10³ бактериальных клеток на 1 см²[ до 10⁶ на 1000 см² ] и до 1× 10⁴ грибов на 1 см²[до 10⁷ грибов на 1000 см²].

2. Моющие и антимикробные электрохимически активированные растворы синтезировались на установке СТЭЛ-10Н-120-01;

вырабатывались растворы следующих типов:

анолит нейтральный АНК (рН = 7,2 - 7,8; окислительно-восстановительный потенциал (ОВП) 650 ¸ 700 мВ, ХСЭ; концентрация сильных окислителей (КО) 3 - 4 ммоль/л (эквивалент активного хлора 200 - 300 мг/л);
анолит кислый А (рН = 2,5 - 3,5; ОВП = 800 - 1000 мВ, ХСЭ, КО = 5 - 8 ммоль/л [эквивалент активного хлора 350 - 550 мг/л];
католит щелочной К (рН = 10 - 11,5; ОВП = (- 750 ¸ 830) мВ, ХСЭ; эквивалента активного хлора не содержит).

Срок годности растворов от момента получения не более 50 ч.

3. Обеззараживание секционного помещения проводилась в соответствии с разработанным Регламентом (см. ниже).

4. Изучение дезинфицирующего действия электрохимически активированных растворов, синтезированных на установке СТЭЛ, на объекты в секционном помещении показало:

значительное уменьшение микробного показателя после первичной обработки и в течение последующих трех недель обработки было обнаружено в смывах с поверхности секционного стола - снижение обсемененности микроорганизмами на 6 порядков в пересчете на 1000 см²;
уменьшение микробного показателя после обработки происходило во всех исследованных группах (секционный стол, инструменты; примечание - для обеззараживания деревянного подголовника ввиду особенности его материала требуется длительное его замачивание в анолите А и (или) АНК методом погружения);
изменения показателей зараженности воздуха в секционном помещении малодостоверны и не дали существенных результатов из-за большой концентрации формалина в воздухе секционного зала.

Выводы

Секционные помещения судебно-медицинских и патолого-анатомических лабораторий после работы с биологическим материалом, учитывая специфику объектов исследования, необходимо подвергать обязательной дезинфекции после каждого исследования.
Принимая во внимание возможность получения больших объемов моющих и антимикробных электрохимически активированных растворов, синтезированных на установках СТЭЛ, их экономичность, простоту получения, доступность, экологическую и токсикологическую безопасность, безвредность для организма человека и животных - электрохимически активированные растворы типа анолита, а также католит (вспомогательный раствор) следует считать предпочтительными для использования их в целях мойки и дезинфекции секционных помещений и инструментов в лабораториях судебно-медицинского и патолого-анатомического профиля.
В целях санитарного благополучия в секционных помещениях следует заменить деревянные предметы на изделия из пластика.

Регламент обеззараживания помещений секционных залов судебно-медицинских и патолого-анатомических лабораторий с помощью моющих и антимикробных электрохимически активированных растворов, синтезированных на установках СТЭЛ

1. Цикл начальной (первичной) обработки (производится один раз перед началом регулярного использования электрохимически активированных растворов для обработки секционного помещения в дальнейшем).

При переходе к регулярному применению электрохимически активированных растворов для мойки и обеззараживания помещений секционных залов судебно-медицинских и патолого-анатомических лабораторий синтезировать на установке СТЭЛ в соответствии с Инструкцией по эксплуатации из исходного водно-солевого раствора электрохимически активированные растворы в целом из расчета на помещение 100 - 160 м³. Готовят растворы следующих типов:

католит щелочной К ( рН = 10 - 11,5) (в объеме 20 - 30 л);
анолит кислый А ( рН = 2,3 - 3,5; эквивалент активного хлора 350 - 550 мг/л) (в объеме 20 - 30 л.);
анолит нейтральный АНК (рН = 7,2 - 7,8; эквивалент активного хлора 200 - 300 мг/л) (в объеме 40 - 60 л).

После проведенного секционного обследования или иной работы с биологическим материалом или при начальной обработке помещения перед его дальнейшей регулярной эксплуатацией по назначению производят следующие действия.

При наличии в помещении значительного количества видимых загрязнений типа пыли, механического мусора, песка, следов от обуви на полу и т.д., необходимо предварительное смывание указанных загрязнений обычной водой [например, из пожарного шланга], после чего проводятся мероприятия с применением электрохимически активированных растворов.

С помощью ветоши, смоченной в католите К, смывают с загрязненных поверхностей видимые следы крови и других биологических выделений.

Затем с помощью струи анолита А производят энергичной орошение поверхностей, обработанный перед этим католитом К.

После того, как подлежащие обеззараживанию поверхности освобождаются от видимых следов органических субстратов и механической грязи, производят дезинфекцию с помощью анолита нейтрального АНК. С помощью ветоши, смоченной анолитом АНК, тщательно протирают поверхности и инструменты, меняя при этом ветошь по мере ее использования. При возможности обрабатываемые поверхности или инструменты орошают анолитом АНК с естественным подсыханием последнего.

Инструменты, использованные при работе с секционным материалом, после обработки водопроводной водой для удаления биологических наложений, необходимо погрузить в раствор анолита АНК на 5 - 10 мин., затем ополоснуть водопроводной водой для удаления остатков раствора.

Эффективность начальной обработки секционного помещения с помощью электрохимически активированных растворов проверяется микробиологическим тестированием.

2. Цикл регулярной (плановой) обработки секционного помещения с применением электрохимически активированных растворов.

После проведения начальной обработки секционного помещения согласной условиям, указанным в п. 1 настоящего Приложения приступают к регулярному обеззараживанию секционного помещения с применением электрохимически активированных растворов.

После каждого секционного исследования (вскрытие трупа или работа с другим биологическим материалом) в помещении секционного зала поверхности столов для вскрытия трупов, предметы, используемые в работе, столики для исследования органокомплексов, чащи весов, лотки и т.д. после удаления механических загрязнений водопроводной водой следует протереть и при возможности оросить анолитом АНК с естественным подсыханием последнего.

Предметы в секционном помещении типа подставок или подголовников, сделанные из дерева, необходимо либо заменить пластмассовыми изделиями, либо регулярно вымачивать деревянные предметы в анолита А и (или) АНК до 3 часов.

По окончании всех секционных работ в помещении после влажной уборки водопроводной водой (при желании, католитом К) провести обработку (орошение) анолитом АНК с последующим подсыханием.

Периодически (один раз в месяц или в квартал) осуществляется санитарно-бактериологический контроль секционного помещения.

Генеральная (полномасштабная) обработка секционной по п.1 осуществляется или в плановом порядке (раз в месяц или в квартал) или при появлении признаков санитарно-бактериологического неблагополучия, выявленного при контрольной проверке.

Внедрение установок СТЭЛ в систему судебно-медицинских и патолого-анатомических лабораторий снижает эпидемиологический риск для персонала и населения и дает хороший экономический эффект. Эксплуатация установок СТЭЛ осуществляется по установленным правилам в соответствии с технической документацией. Для борьбы с воздушной инфекцией в помещении секционных целесообразно распыление анолита АНК в виде аэрозоля.

Б. Экспресс-консервация невскрытых трупов с применением ЭХА растворов.

В связи с ростом количества техногенных катастроф, стихийных бедствий, вооруженных конфликтов, как на территории нашей страны так и за рубежом, при массовых поступлении трупов для судебной медицины становится все более актуальной проблема "сохранности" трупов на время их доставки для исследования в специализированные лаборатории на значительном удалении от места событий. При этом транспортировка останков и их хранение в течение первых 3 - 5 суток от момента наступления смерти зачастую происходят в условиях без применения холодильной техники (при отсутствии холодильных установок) и при отсутствии необходимых компонентов для проведения классического бальзамирования.

Специалисты ЦСМЛ провели исследование эффективности электрохимически активированного раствора (анолита), синтезированных на установках СТЭЛ для экспресс-консервации невскрытых трупов для их хранения в условиях окружающей среды (при отсутствии холодильных установок) и при необходимости их транспортировки из района ЧС в судебно-медицинскую лабораторию.

Объекты исследования: трупы животных (лабораторные крысы), органы человека, трупы людей.

Цель исследования: определить необходимую концентрацию раствора анолита в консервирующей смеси с минимальным содержанием формалина (в особых случаях - при отсутствии формалина).

Методы исследования: секционное исследование трупов и органов, гистологическое исследование органов.

Синтез электрохимически активированного анолита:

Активированные растворы анолита синтезировались на установке СТЭЛ-10Н-120-01; вырабатывались растворы следующих типов:

анолит нейтральный АНК (рН = 7,2 - 7,8; окислительно-восстановительный потенциал (ОВП) 650 ¸ 700 мВ, ХСЭ; концентрация сильных окислителей (КО) 3 - 4 ммоль/л (эквивалент активного хлора 200 - 300 мг/л);
анолит кислый А (рН = 2,5 - 3,5; ОВП = 800 - 1000 мВ, ХСЭ, КО = 5 - 8 ммоль/л [эквивалент активного хлора 350 - 550 мг/л].

Получение антисептического консервирующего раствора для экспресс-консервации трупов.

Антисептический консервирующий раствор для экспресс-консервации трупов делают на основе анолита АНК (рН = 7,2 - 7,8; окислительно-восстановительный потенциал (ОВП) 650 ¸ 700 мВ, ХСЭ; концентрация сильных окислителей (КО) 3 - 4 ммоль/л (эквивалент активного хлора 200 - 300 мг/л), синтезированного на установке СТЭЛ, в который добавляют формальдегид до получения 0,5% раствора формалина на анолите АНК. (Для исследовательских целей в качестве консервирующего раствора могут использоваться 0,5% раствор формалина на анолите А или анолит АНК без добавления формальдегида.)

Результаты исследования:

1. При использовании электрохимически активированного анолита, синтезированного на установке типа СТЭЛ, наиболее подходящим для целей экспресс-консервации оказался анолит нейтральный АНК. Для достижения большей продолжительности трупа и эффективности бальзамирования использовали комплексную методику введения в труп антисептического раствора анолита.

Первый этап. Введение анолита путем инъекции через бедренную артерию (наиболее доступный и экономичный способ).

Для доступа к бедренной артерии делают разрез в верхней части правого бедра, начиная его на середине пупартовой связки и направляя вниз; тупым путем доходят до бедренной артерии; освобождают ее от соединительных тканей на протяжении 5 - 6 см, подводят три лигатуры. Затем надсекают ножницами ее стенку, извлекают из просвета "сверток" (сгусток крови), если таковой имеется, после чего в образовавшееся отверстие вводят наконечник соответственно диаметру артерии (в направлении к сердцу, а затем к периферии). Прикрепив к наконечнику артерию стягиванием средней из трех лигатур, производят нагнетание в просвет артерии консервирующего раствора (анолита или иного консерванта).

После того, как раствор консерванта начинает вытекать из дистальной части сосуда через артерию, в которую введен наконечник, артерию стягивают верхней лигатурой и продолжают инфузию консерванта. По окончании инфузии артерию перевязывают лигатурой, приготовленной ниже введенного наконечника, а последний вынимают. После извлечения наконечника полость раны заполняют ватой, смоченной консервантом, а потом рану ушивают. По направлению к сердцу в сосуд вливают 3 - 4 литра жидкости, к переферии - около 1 литра. Для большей гарантии можно сделать последовательные инфузии консерванта через обе бедренные артерии. Вся процедура инфузии консерванта должна происходить при соблюдении следующих условий:

труп должен лежать на спине, голова - находиться на одной плоскости с туловищем, ноги - слегка раздвинуты, руки - выпрямлены и откинуты в стороны;
никакого давления на труп производить нельзя;
инфузия консерванта производится медленно и под небольшим давлением;
если при введении жидкости ощущается препятствие, инфузию временно прекращают, чтобы жидкость равномерно распределилась в тканях, а затем инфузию продолжают;
необходимо постоянное наблюдение за тем, как идет распределение жидкости: - по появлению на коже беловатых пятен, которые постепенно сливаются друг с другом (это один из первых признаков поступления жидкости в кожные сосуды), - по появлению напряжения кожных вен и поверхностно расположенных артерий, - общее напряжение кожных покровов;
после вливания около 2 литров жидкости, делают перерыв и производят легкий массаж лица (особенно ушных раковин), рук для того, чтобы вытеснить из них задержавшуюся кровь.

После окончания инфузии сосуда может случиться, что какая-нибудь часть тела окажется недостаточно заполненной или совсем незаполненной консервирующим раствором. В таких случаях необходимо сделать дополнительное заполнение данной части тела через соответствующие регионарные артерии (голова - обе сонные артерии, по 200 мл в каждую; верхняя конечность - подключичная артерия; нижняя конечность - наружная подвздошная или бедренная артерия, 1 литр). Если это не удается, то производят введение дезинфицирующей (консервирующей) жидкости шприцом непосредственно в ткань, способствуя распространению жидкости массажем.

Второй этап. В грудную и брюшную полости через прокол иглой кожи и подлежащих тканей вводят консервирующую жидкость: в каждую плевральную полость - около 500 мл, в брюшную полость - около 2 литров.

Третий этап. Тщательно очистив полость рта через зонд вводят в желудочно-кишечный тракт около 500 мл консервирующего раствора, а также через анальное отверстие - около 1 литра; после окончания вливания вводят в ротовую полость и в анальное отверстие ватные тампоны, смоченные тем же раствором.

Четвертый этап. Очищают естественные отверстия (ушей, носа и т.д.). В глубину слуховых проходов, в носоглотку через отверстие носа, во влагалище вводят ватные тампоны, смоченные дезинфицирующей жидкостью.

Пятый этап. Когда имеется необходимость длительной сохранности внешнего облика трупа (главным образом его лица), то непосредственно после инфузии сосудов производят при помощи шприца с тонкой иглой осторожное введение глицерина под кожу различных частей лица (губы, нос, века, щеки, виски) и рук и распределяют глицерин массажем. Для разжижения глицерина к нему добавляют 1/3 часть этилового спирта (при этом вколы иглы делают так, чтобы они остались незаметными, например, через брови, слизистую оболочку губ, через ноздри, на руках - в промежутках между пальцами и под ногти).

Шестой заключительный этап. По окончании бальзамирования труп обмывают консервирующим (дезинфицирующим) раствором.

Применение указанного способа позволяет замедлить процессы трупного разложения на срок до 3 - 5 суток (в зависимости от массы тела, его кровенаполнения и температуры окружающей среды). Учитывая сравнительно небольшую концентрацию окислителей в анолите, при которой обеспечивается стойкий антисептический эффект, экологическую чистоту раствора, простоту его получения, доступность, экономичность и возможность получения его в больших количествах на месте применения, анолит следует считать предпочтительным средством при использовании в качестве составляющего компонента в консервирующих растворах для экспресс консервации трупов.

Практические рекомендации по использованию электрохимически активированного раствора (анолита), синтезированного на установке СТЭЛ, в целях экспресс-консервации (бальзамации) для хранения невскрытых трупов с отсутствием холодильников и при необходимости их транспортировки из района бедствия в судебно-медицинскую лабораторию.

По результатам исследования эффективности электрохимически активированного анолита, синтезированного на установках СТЭЛ, в качестве консервирующего и антисептического средства, препятствующего развитию в биологических тканях гнилостных и автолитических процессов, предлагаются следующие Практические рекомендации по использованию анолита в целях экспресс-консервации трупов.

Для полного бальзамирования невскрытого трупа требуются.

Консервирующий раствор 0,5% формалина в анолите нейтральном АНК (рН = 7,2 - 7,8; окислительно-восстановительный потенциал (ОВП) 650 ¸ 700 мВ, ХСЭ; концентрация сильных окислителей (КО) 3 - 4 ммоль/л (эквивалент активного хлора 200 - 300 мг/л), синтезированного на установке СТЭЛ. Для получения раствора формалина должен быть использован анолит не позже, чем через 24 часа после его получения. Общий объем консервирующего раствора - 10 - 13 литров на одну процедуру бальзамирования.
Секционный нож, шприц Жане или ирригационная кружка Эсмарха, шприцы 10 - 20 мл с набором инъекционных игл, набор канюль, резиновых трубок, иглы лигатурные, пинцеты автоматические, емкости для консервирующего раствора (основные и вспомогательные), вата.

Наиболее эффективным для экспресс-консервации трупа явился раствор 10% формалина в анолите АНК в объемной пропорции 1 : 20 (одна часть 10% формалина к 19 частям анолита АНК) в результате чего получается 0,5% раствор формалина на анолите АНК.